DMS53细胞是一种来源于54岁未接受治疗的白人男性患有小细胞肺癌的细胞系，分离自纵隔活检组织。DMS53细胞表现出典型的上皮样形态，应用于小细胞肺癌的研究，尤其是在探索癌症生物学特性及药物筛选领域。DMS53细胞在早期传代时曾受到牛支原体Acholeplasma laidlawii的污染，但在冷冻保存前通过抗血清和卡那霉素衍生物得以清除。

DMS53细胞特性特征

• 致瘤性：在皮下移植裸鼠实验中，DMS53细胞展示了显著的致瘤性，当接种107个细胞时，肿瘤在21天内以100%的发生率形成（5只裸鼠中全部发生肿瘤）。

• 抗原表达：表达Leu 7和My23抗原。表达HLA I类和II类抗原，这使其在免疫反应研究中具有重要意义。

• 基因表达：表达多种激素和生长因子，包括促肾上腺皮质激素、降钙素、人绒毛膜促性腺激素、胰高血糖素、生长激素、17-β-雌二醇、甲状腺释放激素、催产素、甲状旁腺素和生长抑素样免疫反应性。

• 表达标记：Bombesin、表皮生长因子（EGF）、转化生长因子β（TGF-β）和乙酰胆碱的表达

DMS53人肺癌细胞参数表

DMS53人肺癌细胞培养教程

DMS53细胞复苏步骤

• 从液氮中取出DMS53细胞的冻存管，立即放入37℃的水浴中，轻轻摇动，确保DMS53细胞迅速解冻（通常1-2分钟内完成）。

• 解冻后，将1 mL DMS53细胞悬液转移至含4 mL培养基的离心管中（培养基可使用Waymouth's MB 752/1，添加10%胎牛血清[FBS]）。

• 在1000 rpm下离心3-4分钟，去除上清液，保留DMS53细胞。

• 用1-2 mL新鲜培养基将DMS53细胞重悬，确保细胞分散均匀。

• 将重悬后的DMS53细胞转移到培养瓶或培养皿中，加入约8 mL新鲜培养基。

• 将DMS53细胞置于37℃、5% CO₂的培养箱中过夜培养。

• 次日更换培养基，检查DMS53细胞的贴壁情况及生长状态。

DMS53细胞传代步骤

• 当DMS53细胞密度达到80%-90%时，可以进行传代操作。

• 弃去培养基后，用无钙镁的PBS冲洗DMS53细胞1-2次，去除残余培养液。

• 向培养瓶中加入1 mL胰蛋白酶-EDTA消化液（0.25%胰酶-0.53 mM EDTA），确保DMS53细胞表面被消化液均匀覆盖。

• 将培养瓶置于37℃培养箱中，观察1-2分钟，直至DMS53细胞变圆、开始脱落时，轻轻敲打瓶壁以加速脱落。

• 使用新鲜培养基终止消化，轻柔地将DMS53细胞吹打悬浮。

• 在1000 rpm下离心4分钟，去除上清。

• 用新鲜培养基重悬DMS53细胞，确保分散均匀。

• 将DMS53细胞悬液按1:2比例分到新的培养瓶或培养皿中，加入8 mL新鲜培养基。

• 将DMS53细胞置于37℃培养箱中继续培养，定期检查生长情况。

DMS53细胞冻存步骤

• 当DMS53细胞生长状态良好、细胞密度适中时，收集细胞进行冻存。

• 将DMS53细胞与培养液一起转移到无菌离心管中，在1000 rpm下离心4分钟。

• 弃去上清后，用PBS冲洗DMS53细胞并计数，确保细胞浓度在5×10⁶至1×10⁷/mL之间。

• 使用无血清冻存液将DMS53细胞悬浮，按细胞密度5×10⁶至1×10⁷/mL的标准配置。

• 将1 mL DMS53细胞悬液装入冻存管，做好标识。

• 将冻存管置于程序降温盒中，逐步降低至-80℃，通常在24小时后将DMS53细胞转移至液氮罐中长期保存。