OCI-LY10细胞系源自一位66岁女性患者的淋巴结，其确诊为弥漫性大B细胞淋巴瘤（Diffuse Large B-Cell Lymphoma, DLBCL），这是一种以成熟B细胞为起源的侵袭性非霍奇金淋巴瘤。

OCI-LY10细胞系是DLBCL研究中重要的体外模型，为研究DLBCL的生物学机制及治疗反应提供了宝贵的实验工具。OCI-LY10细胞在悬浮培养中生长，并经过严格的检测程序，确保无细菌、酵母和支原体等微生物污染。OCI-LY10细胞系在体外培养条件下的特性和稳定性，使其成为理解DLBCL发病机制及筛选新型治疗方法的关键研究对象。

OCI-LY10细胞特性特征

• 基因组特征：OCI-LY10细胞系在基因组上可能具有与弥漫性大B细胞淋巴瘤相关的特定突变或扩增，例如9p24.1区域的选择性扩增，这与PD-1配体表达增加相关。

• 抗原表达：OCI-LY10细胞可能表达多种B细胞标志物，如CD19、CD20等，这些标志物在流式细胞术中可用于鉴定和分析。

• 受体表达：OCI-LY10细胞可能表达与肿瘤微环境相互作用相关的受体，例如PD-1和其他免疫检查点分子。

• OCI-LY10细胞系广泛应用于癌症研究、药物筛选、免疫治疗等领域，帮助科学家深入理解弥漫性大B细胞淋巴瘤的生物学特征及其对治疗的反应。

OCI-LY10细胞参数表

OCI-LY10人弥漫大B细胞淋巴瘤细胞培养教程

OCI-LY10细胞复苏

• 将水浴锅预热至37℃。

• 准备好RPMI-1640培养基，加入20%胎牛血清（FBS）和1%青霉素-链霉素（P/S）抗生素混合溶液，确保OCI-LY10细胞处于理想的培养条件。

• 从液氮中取出冻存的OCI-LY10细胞，立即放入37℃水浴中，轻轻摇晃以加速解冻过程，通常需要1-2分钟。

• 细胞完全解冻后，迅速移入无菌操作台，加入4 mL预温培养基稀释OCI-LY10细胞悬液，并轻轻混匀。

• 将OCI-LY10细胞悬液转移至离心管，在1000 rpm下离心3-4分钟，去除上清液。

• 用不含钙、镁的PBS（磷酸盐缓冲液）洗涤OCI-LY10细胞一次，去除残留的二甲基亚砜（DMSO）。

• 加入1-2 mL培养基重新悬浮OCI-LY10细胞，轻轻吹打确保均匀分布。

• 将悬液转移至T25培养瓶或10 cm培养皿，加入8 mL培养基。

• 将培养瓶放入37℃、5% CO₂的培养箱中培养过夜。

• 第二天检查OCI-LY10细胞的贴壁情况和生长状态，定期观察其生长进程。

OCI-LY10细胞传代

• 当OCI-LY10细胞的密度达到80%-90%时，进行传代。

• 检查细胞有无污染，若发现污染，需及时处理。

• 弃去旧培养基后，用PBS洗涤OCI-LY10细胞1-2次。

• 加入1 mL消化液（0.25%胰蛋白酶-EDTA溶液），置于37℃培养箱中消化1-2分钟，观察OCI-LY10细胞收缩、变圆后停止消化。

• 加入适量培养基中和胰蛋白酶，轻轻吹打悬浮OCI-LY10细胞。

• 将细胞悬液离心1000 rpm 4分钟，弃去上清液，重新用新鲜培养基重悬OCI-LY10细胞。

• 根据细胞密度，将OCI-LY10细胞悬液按1:2的比例分配至新的培养瓶或培养皿中，补充足够的培养基。

• 将新培养瓶放回培养箱，继续培养OCI-LY10细胞，定期观察其生长情况。

注意事项

• 无菌操作：在OCI-LY10细胞培养的整个过程中，务必保持无菌操作，避免污染。

• 细胞状态监测：定期使用显微镜检查OCI-LY10细胞的生长状态，尤其注意细胞形态及污染迹象。

• 污染防治：一旦发现OCI-LY10细胞培养中有污染，应及时隔离处理，确保细胞健康生长。

• 解冻与传代及时性：OCI-LY10细胞的解冻和传代应迅速完成，避免细胞暴露在非理想条件下过久，防止细胞损伤。