NU-DUL-1细胞系源自1985年从一名43岁白人男性的腹膜积液中分离，该患者被确诊为弥漫性大B细胞淋巴瘤（DLBCL）。NU-DUL-1细胞系以悬浮方式生长，具有典型的淋巴母细胞形态。NU-DUL-1细胞系在研究未分化淋巴瘤的细胞生物学特性、基因组重排和分子机制方面，具有重要的实验价值。

NU-DUL-1细胞系的染色体核型为亚二倍体，带有复杂的染色体异常，包括14号染色体的易位，但与11号或18号染色体无关，可能代表一种新的易位变异。此外，推测该细胞系Y染色体缺失。基于染色体和遗传分析，NU-DUL-1细胞系为研究DLBCL中特殊的基因组重排提供了一个新的模型。

NU-DUL-1细胞特性特征

• 抗原表达：LN-1+、LN-2+、LN-3+（抗HLA-Dr）；BA-1+（CD24）；CALLA（J5）+（CD10）；BA-2-（CD9）；OKM1-（髓系标志物）；Leu-7-（自然杀伤T细胞标志物）；

• 多个T细胞标志物（如OKT-3、OKT-4等）呈阴性；EBNA-（爱泼斯坦-巴尔核抗原）阴性

• 免疫表型：NU-DUL-1细胞表达早期B细胞分化的标志物，显示出未分化淋巴瘤的特征。

• sIg：NU-DUL-1细胞系对表面免疫球蛋白(sIg)呈阴性。

• NU-DUL-1细胞系还表现出与恶性脑脊液的关联，表明其可能具有高度侵袭性或转移性特征

NU-DUL-1细胞参数表

NU-DUL-1人弥漫性组织细胞性淋巴瘤培养教程

NU-DUL-1细胞复苏步骤

• 从液氮中取出NU-DUL-1细胞冻存管后，立即放入37℃的水浴中迅速解冻，持续1-2分钟，轻轻摇晃以加速解冻过程。

• 准备完全培养基：RPMI-1640培养基，添加10%胎牛血清（FBS）和1%青霉素/链霉素（P/S）。

• 解冻完成后，缓慢将NU-DUL-1细胞悬液加入到5 mL预热的完全培养基中，确保混合均匀。

• 将混合后的NU-DUL-1细胞悬液在1000 RPM下离心3-5分钟，弃去上清。

• 加入4-6 mL新鲜的完全培养基，轻轻吹打混匀，以确保NU-DUL-1细胞均匀分布。

• 将NU-DUL-1细胞悬液转移至T25培养瓶中，并放入37℃、5% CO₂的培养箱中过夜培养。

NU-DUL-1细胞传代操作

• 传代时机：当NU-DUL-1细胞密度达到80%-90%时，需进行传代。

• 弃去上清液，使用无钙、无镁的PBS（磷酸盐缓冲液）缓冲液洗涤NU-DUL-1细胞1-2次。

• 根据NU-DUL-1细胞状态，加入0.25%胰蛋白酶-EDTA混合溶液，消化1-2分钟，并使用显微镜观察细胞脱落情况。

• 当细胞大部分变圆脱落时，立即终止消化，加入含10% FBS的完全培养基。

• 将消化后的NU-DUL-1细胞在1000 RPM下离心3-5分钟，弃去上清。

• 重悬NU-DUL-1细胞于新鲜培养基中，并根据所需的细胞密度，以1:2至1:5的比例分配至新培养瓶。

NU-DUL-1细胞冻存步骤

• 使用90%胎牛血清和10%二甲基亚砜（DMSO）制备NU-DUL-1细胞的冻存液。

• 收集生长状态良好的NU-DUL-1细胞，在1000 RPM下离心3-5分钟，弃去上清。

• 将NU-DUL-1细胞重悬于冻存液中，按1 mL/冻存管的量分装。

• 逐步降低温度，将冻存管置于程序性降温盒中，随后放入液氮中长期保存。

注意事项

• NU-DUL-1细胞为悬浮细胞，操作时需避免直接倾倒，建议通过离心收集以减少细胞损失。

• 保持NU-DUL-1细胞培养环境的无菌操作，定期检查培养基的颜色和细胞生长情况，及时更换培养基以维持良好的生长环境。

• 传代时避免过度消化，确保NU-DUL-1细胞活性保持最佳状态。

• 进行复苏、冻存或传代操作时，建议拍照记录NU-DUL-1细胞状态，确保操作的可追溯性。