OCUT-2C细胞（人未分化甲状腺癌细胞）

OCUT-2C细胞系是一种来源于人类甲状腺未分化癌（ATC）的细胞株，具有重要的研究和应用价值。OCUT-2C细胞系来源于一位81岁女性患者的胸腔积液中的转移灶，经过酶消化和原代培养后建立。为了确保其独特性，OCUT-2C细胞经过短串联重复序列（STR）鉴定，与国际上ATCC、DSMZ、JCRB及RIKEN等数据库中8000多种细胞系进行比较，结果均未发现相符，排除了常见细胞系污染的风险。

OCUT-2C细胞系与母株Ocut-2（来自大阪市立大学）完全一致，证实了其纯度和身份的准确性。OCUT-2C细胞系的建立过程包括单细胞悬液克隆纯化，经过多次传代最终形成稳定的细胞系，这为相关研究提供了可靠的模型。

OCUT-2C细胞特性特征

OCUT-2C细胞表达角蛋白（CK）为阳性，表明其上皮来源。
Ki67阳性率约为60%，显示出较高的增殖活性。
CD68、DES、Pax-8、SMA、TG、TTF1等标志物表达为阴性，表明其未分化特性。
OCUT-2C细胞系在肿瘤生物学研究、新药筛选及临床前研究中具有重要应用价值。它可以作为甲状腺未分化癌的模型，用于研究其发生、发展及转移机制

OCUT-2C细胞参数表

细胞名称	OCUT-2C细胞（人未分化甲状腺癌细胞）
别称	Ocut-2C; OCUT2C; Osaka City University Thyroid-2C
性别/年龄	女 / 81岁
组织来源	胸腔积液中的转移灶
疾病类型	低分化甲状腺癌（anaplastic thyroid carcinoma, ATC）
细胞形态	梭形，上皮样
生长特性	贴壁生长
倍增时间	约72-96小时
培养基	DMEM + 10% FBS + 1% P/S
培养条件	5% CO₂，95%空气，37℃
传代方法	1:2至1:6，每周2次
冻存条件	90% FBS + 10% DMSO，液氮储存
储存温度	活细胞：37℃；冻存管：液氮罐
支原体检测	阴性
STR鉴定报告	与国际数据库中8000余种细胞不相符，确保无污染
基因表达特征	CK阳性，Ki67阳性率约60%；CD68、DES、Pax-8等阴性
生物安全等级	BSL-1
供应限制	仅供科研使用

培养教程

OCUT-2C人未分化甲状腺癌细胞培养教程

收到OCUT-2C细胞后的处理

收到OCUT-2C细胞后，首先检查运输包装，确保无漏液或损坏。如有异常，立即拍照并记录情况。
将OCUT-2C细胞置于显微镜下观察，确认细胞生长状态。确保OCUT-2C细胞无污染且形态正常，细胞活力良好。
去掉OCUT-2C细胞培养瓶（如T25）的封口膜，将其放入37℃培养箱中，培养2-3小时，使OCUT-2C细胞适应新的环境。

OCUT-2C细胞传代方法

传代频率：OCUT-2C细胞通常每周传代2次，按1:2至1:6的比例进行。
当OCUT-2C细胞融合度达到80%-90%时，使用0.25%的胰蛋白酶消化1-3分钟，轻轻敲击瓶壁，使OCUT-2C细胞脱离。加入等体积的完全培养基终止消化后，将OCUT-2C细胞离心收集并重悬于新鲜培养基中，按比例接种到新的培养瓶中继续培养。

OCUT-2C细胞冻存

冻存准备：在OCUT-2C细胞处于对数生长期时收集，离心后重悬于冻存液中。
将重悬后的OCUT-2C细胞分装至冻存管中，并使用程序降温法缓慢降温至-80℃，最终将OCUT-2C细胞转移至液氮中长期保存。

OCUT-2C细胞解冻

从液氮罐中取出OCUT-2C细胞冻存管，迅速放入37℃水浴中解冻，轻轻摇动至完全融化。
解冻后的OCUT-2C细胞立即加入预先准备的完全培养基中，轻轻混匀后离心去除DMSO，将OCUT-2C细胞重悬于新鲜培养基中，并接种到新的培养瓶中继续培养。