HGC-27-Luc细胞是在HGC-27细胞系的基础上构建。HGC-27细胞分离自一位未分化型胃癌患者的淋巴结转移灶，能分泌黏液素，具备典型的胃癌生物学特征。HGC-27-Luc细胞是利用慢病毒载体将萤火虫荧光素酶（Luciferase）基因导入HGC-27细胞，并经过稳定筛选，实现持续表达荧光信号。HGC-27-Luc细胞不仅保留了原始细胞的形态学与肿瘤学特性，还具备光学成像功能，能够在体内外实验中用于实时追踪肿瘤的发生与发展。HGC-27-Luc细胞携带Luc基因。

HGC-27-Luc细胞特性特征

• hgc-27-luc细胞能够分泌黏液素，体现胃癌的分泌特性。

• hgc-27-luc携带慢病毒转染的Luciferase（Luc）基因，能稳定表达荧光素酶，用于体内外肿瘤成像。

• P53基因表达阴性，hgc-27-luc细胞缺失P53蛋白的正常表达功能。

• 高表达某些癌症相关蛋白，如SPHK1（鞘氨醇激酶1），其在胃癌细胞中与肿瘤的迁移和侵袭能力相关。

• hgc-27-luc能分泌黏液素，这是一种胃癌细胞常见的分泌分子，反映肿瘤黏液特性。

• hgc-27-luc含有通过慢病毒载体稳定导入的Luc基因，便于进行活体光学影像分析。

• 癌症相关转录因子及信号通路相关分子在hgc-27-luc细胞中也得到研究，如NF-κB信号通路调控相关基因影响细胞迁移和侵袭

HGC-27-Luc细胞参数表

HGC-27-Luc人胃癌细胞株培养教程

细胞复苏

• 从液氮罐中取出hgc-27-luc细胞冻存管，立即置于37℃水浴中轻轻摇晃，约1–2分钟直至冰晶完全融化。

• 将细胞悬液转移至含10 mL预热完全培养基（DMEM + 10% FBS + 1%青链霉素）的离心管中。

• 1000 rpm（约300 g）离心5分钟，弃去上清以去除DMSO。

• 将hgc-27-luc细胞轻轻重悬于5–10 mL新鲜完全培养基中。

• 转移至25 cm²培养瓶，置于37℃、5% CO₂培养箱中培养。

• 24小时后更换培养基，去除死亡细胞；待细胞贴壁及状态稳定后进入常规传代。

细胞传代

• 吸去旧培养液，用PBS轻轻冲洗hgc-27-luc细胞1–2次，去除残留血清。

• 加入0.25%胰酶-EDTA（含0.53 mM EDTA）约1–2 mL，置37℃孵育1–2分钟，直至细胞边缘变圆、开始脱落。

• 轻轻吹打使细胞完全悬浮。

• 加入2–3倍体积完全培养基终止消化。

• 按1:2–1:4比例分瓶接种至新培养瓶，补充适量完全培养基。

• 将hgc-27-luc细胞放入培养箱继续培养，每48–72小时换液一次。

细胞冻存

• 在对数生长期、状态良好时收集hgc-27-luc细胞。

• 胰酶消化并离心，弃去培养基。

• 配制冻存液：90% FBS + 10% DMSO。

• 将hgc-27-luc细胞重悬后调整密度至1×10⁶–5×10⁶ cells/mL。

• 分装至冻存管，每管约1 mL。

• 使用程序降温盒（约-1℃/min），先于-80℃保存12–24小时，再转入液氮长期保存。

注意事项

• hgc-27-luc细胞在冻存和复苏过程中应快速操作，减少DMSO毒性。

• 复苏后应及时更换培养基，促进细胞恢复。

• 传代时避免过度胰酶消化，以免损伤细胞。

• 保持无菌操作，防止细菌、真菌或支原体污染。

• hgc-27-luc细胞携带Luc基因，随传代次数增加荧光信号可能减弱，应使用嘌呤霉素筛选以维持稳定表达