TE12细胞系是从一名54岁中国男性食管癌患者的胸水中提取肿瘤细胞，经原代培养后成功建立的。这名患者确诊为食管鳞状细胞癌（ESCC），病情处于临床IV期，并伴有多处淋巴结转移。TE12细胞系具有较高的克隆形成能力和显著的肿瘤发生性，为研究食管癌提供了有力的实验模型，尤其适合用于药物筛选和机制探讨。

TE12细胞系的建立在食管癌研究中具有重要意义，特别是对中国患者群体的研究。这是因为现有的许多食管癌细胞系大多来自其他国家，可能无法准确代表中国食管癌患者的肿瘤特征，而TE12细胞系为针对中国食管癌的深入研究提供了独特的模型。

TE-12细胞特性特征

• 克隆形成能力：TE-12细胞具备较强的克隆形成能力，适合用于细胞培养和实验研究。

• 成瘤性：TE-12细胞表现出良好的成瘤性，能够在动物模型中形成肿瘤。

• 基因表达：TE12细胞系中可能涉及多种与肿瘤转移和侵袭相关的基因，例如N-cadherin。N-cadherin的高表达与食管癌的浸润和转移密切相关，可能在肿瘤细胞间的黏附和迁移中发挥重要作用1。

• 蛋白特征：N-cadherin在TE12细胞系中的表达水平较高，这表明其在肿瘤进展中的潜在作用。研究表明，N-cadherin的增加与肿瘤的恶性程度及转移能力相关

TE-12细胞参数表

TE-12人食管癌细胞培养教程

细胞解冻

• 将TE-12细胞冻存管从液氮罐中取出，迅速放入37°C的水浴中，轻轻摇晃使其快速解冻。

• 解冻后，将TE-12细胞悬液转移到含有9 mL预热的培养基的离心管中。

• 以125 × g离心7分钟，弃去上清液，保留细胞沉淀。

细胞重悬

• 将离心后的TE-12细胞沉淀用5 mL完全培养基（培养基中含10% FBS）重悬。

• 将细胞悬液移入T25或T75培养瓶中，确保瓶子清晰标记为TE-12细胞。

细胞培养

• 将培养瓶放入37°C、5% CO₂的培养箱中进行培养TE-12细胞。

• 每天使用显微镜观察TE-12细胞生长状态，监测细胞形态和汇合度，通常在细胞密度达到80%-90%时进行传代。

传代培养

• 当TE-12细胞密度达到80%-90%时，首先用PBS轻轻洗涤一次细胞，以去除培养基残留。

• 加入2-4 mL胰蛋白酶-EDTA溶液，孵育2-5分钟，直至TE-12细胞脱落。

• 轻轻敲打培养瓶侧壁，帮助细胞完全从瓶壁上脱离。

• 加入等体积的完全培养基终止胰蛋白酶消化反应。

• 将TE-12细胞悬液转移到离心管中，125 × g离心5分钟，弃去上清液。

• 重悬细胞于新鲜培养基中，按1:3到1:6的比例进行传代。

细胞接种

• 将重悬的TE-12细胞按所需密度（1 × 10^5至1 × 10^6个细胞/mL）接种至新的培养瓶中。

• 每2-3天更换一次培养基，去除代谢废物并提供新鲜的营养物质。