MUTZ-1细胞系最初被认为来源于一名5岁患有骨髓增生异常综合征（MDS）的土耳其女孩，具体诊断为难治性贫血伴大量原始细胞（refractory anemia with excess of blasts）。该女孩还患有Fanconi贫血，这是一种遗传性疾病，影响骨髓的造血功能。MUTZ-1细胞系于1994年从外周血样本中分离建立，并被广泛用于MDS病理机制的研究、药物筛选以及探索骨髓微环境与疾病的相互作用。

有研究表明，MUTZ-1细胞系与Namalwa细胞系之间存在污染（PubMed=19344951），STR鉴定结果显示MUTZ-1细胞系与国家细胞资源库中的Namalwa细胞系完全匹配，这引发了对其来源的质疑。

尽管如此，MUTZ-1细胞系仍被广泛用于MDS的研究，尤其是在儿童MDS模型的构建中。MUTZ-1细胞系也是研究造血系统疾病的一个经典模型，助力更深入了解儿童与成人MDS的病理差异和治疗策略。

MUTZ1细胞特性特征

• 免疫表型：MUTZ1细胞表达多种髓系标志物，包括CD10、CD19和细胞质IgM，显示出前B细胞表面标志的特征。这些标志物的表达支持了其作为髓系前体细胞的身份。

• 染色体异常：MUTZ1细胞系具有高度重排和不稳定的核型，表现出高频率的自发染色体断裂和重排。具体异常包括：5号染色体缺失（del(5q)）、其他涉及5号染色体的重排（如der(15)t(5;15)）

• 基因重排：MUTZ1细胞表现出显著的基因重排现象。

• 致病机制：MDS的转化事件可能发生在未成熟的多能祖细胞中，这为理解MDS的发展提供了重要线索

MUTZ1细胞（人骨髓增生异常综合征细胞）参数表

MUTZ1人骨髓增生异常综合征细胞培养教程

细胞复苏

• 所有操作应在无菌环境下进行，使用生物安全柜确保无菌操作。

• 预先准备完全培养基：RPMI-1640培养基，加入10%胎牛血清（根据需求调整血清浓度，通常不超过20%）。

• 从液氮罐中取出冻存的MUTZ1细胞，将冻存管迅速放入37℃水浴中，轻轻摇动，约1-2分钟使细胞完全解冻。

• 将解冻的细胞悬液转移至10ml完全培养基的离心管中，轻轻混匀。

• 以1000 rpm离心5分钟，去除含有二甲基亚砜（DMSO）的上清液。

• 小心去除上清液，用新鲜的完全培养基重悬MUTZ1细胞，并将细胞转移至培养瓶中开始培养。

日常培养

• 每2至3天需更换一次培养基，保持MUTZ1细胞的生长环境新鲜。

• 定期检查MUTZ1细胞的形态和生长状态，确保其处于良好生长状态。

• 若培养基pH值显著下降至7.2以下，建议及时更换培养基。

传代操作

• MUTZ1细胞属于悬浮生长细胞，传代时无需胰酶消化

• 将培养瓶中的MUTZ1细胞悬液轻轻混匀后，取出部分悬液用于传代。

• 在新的培养瓶中加入适量完全培养基，按1:2至1:3的比例稀释MUTZ1细胞悬液。

• 轻轻混匀细胞悬液，并置于培养箱中继续培养。

• 通常，当MUTZ1细胞密度达到适当浓度（约为2-5×10⁵ cells/mL）时应进行传代。传代比例可根据MUTZ1细胞生长情况调整，建议1:2至1:3的传代比例。

细胞冻存

• 当MUTZ1细胞生长至80%密度时，可进行细胞冻存，以备后续实验使用。

• 将MUTZ1细胞悬液收集到离心管中，以1000 rpm离心5分钟，去除培养基。

• 使用含有10% DMSO的冷冻保存液重悬MUTZ1细胞。

• 将重悬的MUTZ1细胞分装至冻存管中，每管加入适量细胞悬液。

• 逐步降温至−80℃，然后将冻存管转移至液氮罐中长期保存。

注意事项

• 所有培养操作必须在无菌条件下进行，避免MUTZ1细胞受到污染。

• 定期监控MUTZ1细胞的生长状态，特别注意pH值和细胞密度。

• 若MUTZ1细胞生长缓慢或状态异常，可适当调整血清浓度或优化培养条件。

• 在冻存和复苏过程中，MUTZ1细胞对DMSO较为敏感，因此操作应快速规范，以减少DMSO对MUTZ1细胞的毒性影响。