HSC-3人口腔鳞状细胞癌细胞系来源于一名63岁男性舌鳞癌患者的转移性淋巴结肿瘤。通过将患者肿瘤组织外植，提取并培养其中的上皮细胞，经过传代后建立。HSC3细胞在体外表现出显著的侵袭性和迁移能力，适用于研究肿瘤的侵袭、转移等生物学行为，特别是转移性鳞状细胞癌研究。

HSC-3细胞特性特征

• 侵袭性：HSC3细胞具有显著的侵袭性和迁移能力，能够在小鼠体内形成转移灶，尤其是在引流淋巴结中。

• 生长因子与分泌物：HSC3细胞的生长因子分泌水平显著升高，这些因子可以促进血管生成，表明其在肿瘤微环境中的重要作用。

• 基因表达：HSC3细胞系在多项研究中显示出不同基因的表达变化，涉及肿瘤转移、细胞运动及增殖等过程。具体的基因表达特征尚需进一步研究，但已知其与多种信号通路相关。

• 受体表达：HSC3细胞系可能表达多种受体，例如与细胞迁移和侵袭相关的受体，这些受体的功能在研究中逐渐被揭示。

• 转移性：HSC3细胞通过皮下移植到裸鼠后可以在淋巴结中形成转移灶，体现其高转移特性。

HSC-3口腔鳞状细胞参数表

HSC-3人口腔鳞状细胞癌细胞培养教程

HSC3细胞复苏

• 将冻存于液氮中的HSC3细胞管从储存中取出，立即置于37℃的水浴中迅速解冻，轻轻摇动以加速解冻过程。整个过程需控制在1-2分钟内完成，避免HSC3细胞暴露在水浴中时间过长。

• 解冻后，将1 mL HSC3细胞悬液转移到含有4 mL预热的培养基（例如：MEM培养基，含10%胎牛血清和1%青霉素-链霉素）中，轻轻混匀。

• 将HSC3细胞悬液在1000 rpm离心3分钟，弃去上清液，以去除冷冻保存液。

• 使用1-2 mL新鲜的培养基重悬HSC3细胞，确保细胞分散均匀。

• 将HSC3细胞悬液转移至适量预热的培养基中，并置于适当大小的培养瓶或培养皿中（如T25培养瓶），通常加入8-10 mL培养基。

• 将HSC3细胞置于37℃、5% CO2培养箱中孵育。约24小时后，观察细胞状态并更换培养基。

HSC3细胞传代

• 当HSC3细胞生长至80%-90%融合时，即可进行传代。

• 将旧培养基弃去，用不含钙、镁离子的PBS轻柔冲洗HSC3细胞1-2次，以去除残留的培养基。

• 加入适量0.25%胰蛋白酶-EDTA溶液，确保覆盖所有HSC3细胞。胰酶应仅覆盖细胞表面，避免过量使用。

• 将培养瓶置于37℃培养箱中消化约1分钟，观察显微镜下HSC3细胞变圆、脱落。消化过程不宜过长，以避免HSC3细胞损伤。

• 消化完成后，加入培养基终止消化，轻轻吹打瓶壁以帮助HSC3细胞脱落。

• 将消化后的HSC3细胞悬液转入无菌离心管中，以1000 rpm离心4分钟，弃去上清液。

• 重悬HSC3细胞于1-2 mL新鲜培养基中，并根据需要按1:2或1:3比例将HSC3细胞分到新的培养瓶或培养皿中，加入适量培养基继续培养。

HSC3细胞冻存

• 当HSC3细胞达到理想状态时，收集细胞并用PBS冲洗一遍，随后在1000 rpm条件下离心4分钟。

• 使用无血清冷冻保存液重悬HSC3细胞，调节细胞密度至5×10^6至1×10^7/mL。

• 将1 mL HSC3细胞悬液分装至每支冻存管中，做好标签标识。

• 先将冻存管置于-80℃冰箱中预冻24小时，随后转移至液氮中长期保存。记录保存位置以便后续取用。

HSC3细胞培养注意事项

• 收到HSC3细胞后，首先观察冻存管是否有破损、漏液等问题，确保没有污染。若发现异常，应及时与供应商联系。

• 仔细阅读并遵循产品说明书，确保使用推荐的培养基和添加剂，如胎牛血清、青霉素-链霉素的比例，保持HSC3细胞生长的稳定性。

• 在操作台表面和设备上使用75%酒精消毒，防止HSC3细胞污染。操作过程中的无菌技术至关重要，尤其在HSC3细胞传代和冻存步骤中。

• 在复苏后的前几天内建议拍摄HSC3细胞照片，记录HSC3细胞状态。若遇到细胞状态不佳或有疑问时，可提供照片以便与供应商或技术支持团队沟通。

• HSC3细胞系仅用于科研实验，禁止用于人体诊断或治疗等临床应用。